人轉鐵蛋白(TF)試劑盒
使用說明書
人轉鐵蛋白(TF)試劑盒基本原理:
本試劑盒采用雙抗體夾心ELISA法。用抗人TF抗體包被于酶標板上,實驗時樣品或標準品中的人TF與包被抗體結合,游離的成分被洗去。依次加入生物素化的抗人TF抗體和辣根過氧化物酶標記的親和素??谷薚F抗體與結合在包被抗體上的人TF結合、生物素與親和素特異性結合而形成**復合物,游離的成分被洗去。加入顯色底物(TMB),TMB在辣根過氧化物酶的催化下呈現(xiàn)藍色,加終止液后變成黃色。用酶標儀在450nm波長處測OD值,人TF濃度與OD450值之間呈正比,通過繪制標準曲線計算出樣品中人TF的濃度
人轉鐵蛋白(TF)試劑盒描述:
英文名稱 | Human TF (Transferrin) ELISA Kit | ||
中文名稱 | 人轉鐵蛋白(TF)酶聯(lián)**吸附測定試劑盒 | ||
貨號 | X-EL-H0171c | 種屬 | Human/人 |
規(guī)格 | 96T/Kit (8*12 strips) 48T/Kit (8*6 strips) | ||
檢測方法 | 雙抗體夾心法 | ||
檢測范圍 | 1.563~100ng/mL | 靈敏度 | 0.938ng/mL |
試劑盒組成:
中文名稱 |
英文名稱 |
規(guī)格 |
保存 |
ELISA酶標板(可拆卸) |
Micro ELISA Plate(Dismountable) |
8×12 / 8×6* |
4℃/-20℃ # |
凍干標準品 |
Reference Standard |
2/1 支* |
4℃/-20℃ # |
標準品&樣品稀釋液 |
Reference Standard & Sample Diluent |
1瓶 20mL/12mL* |
4℃ |
濃縮生物素化抗體 |
Concentrated Biotinylated Detection Ab |
1支 120μL/70μL* |
4℃/-20℃ # |
生物素化抗體稀釋液 |
Biotinytated Detection Ab Diluent |
1瓶 10mL/6mL* |
4℃ |
濃縮HRP酶結合物 |
Concentrated HRP Conjugate |
1支 120μL/70μL* |
4℃(避光) |
酶結合物稀釋液 |
HRP Conjugate Diluent |
1瓶 10mL/6mL* |
4℃ |
濃縮洗滌液(25×) |
ConcentratedWashBuffer (25×) |
1瓶 30mL/16mL* |
4℃ |
底物溶液(TMB) |
Substrate Reagent |
1瓶 10mL/6mL* |
4℃(避光) |
反應終止液 |
Stop Solution |
1瓶 10mL/6mL* |
4℃ |
封板覆膜 |
Plate Sealer |
5/3 張* |
|
產品說明書 |
Product Description |
1 份 |
|
質檢報告 |
Certificate of Analysis |
1 份 |
|
特別說明: |
人轉鐵蛋白(TF)試劑盒檢測前準備工作:
1. 請?zhí)崆?/span>20分鐘從冰箱中取出試劑盒,平衡至室溫。
2. 將濃縮洗滌液用雙蒸水稀釋(1:25)。未用完的放回4℃。從冰箱中取出的濃縮洗滌液可能有結晶,屬于正?,F(xiàn)象,可用40℃水浴微加熱使結晶完全溶解后再配制洗滌液(加熱溫度不要超過50℃,使用時洗滌液應為室溫)。當日使用。
3. 標準品: 于10000×g離心1分鐘,加入標準品&樣品稀釋液1.0mL至凍干標準品中,旋緊管蓋,靜置10分鐘,上下顛倒數(shù)次,待其充分溶解后,用移液器將其輕輕混勻(濃度為8000pg/mL)。然后根據(jù)需要進行倍比稀釋(注:不要直接在反應孔中進行倍比稀釋)。建議配制成以下濃度:按照稀釋方法圖例 標準品&樣品稀釋液直接作為空白孔0ng/mL。如配制5ng/mL標準品:取0.5mL10ng/mL的上述標準品加入含有0.5mL標準品&樣品稀釋液的EP管中,混勻即可,其余濃度依此類推。
4. 生物素化抗體工作液:實驗前計算當次實驗所需用量(以100μL/孔計),實際配制時應多配制100-200μL。使用前15分鐘,以生物素化抗體稀釋液稀釋濃縮生物素化抗體(1:100)成工作濃度。當日使用。
5. 酶結合物工作液:實驗前計算當次實驗所需用量(以100μL/孔計),實際配制時應多配制100-200μL。使用前15分鐘,以酶結合物稀釋液稀釋濃縮HRP酶結合物(1:100)成工作濃度。
當日使用。
人轉鐵蛋白(TF)試劑盒標準品稀釋方法圖例:(以500μL/管為例,也可根據(jù)實際用量來稀釋,如200μL/管)
1. 在各孔中加入標準品或樣品各100μL, 37℃孵育90分鐘
2. 加入100μL 生物素化抗體工作液,37℃孵育60分鐘
3. 洗滌3次
4. 加入100μL酶結合物工作液, 37℃孵育30分鐘
5. 洗滌5次
6. 加入90μL底物溶液, 37℃孵育15分鐘左右
7. 加入50μL終止液,立即在450nm波長處測量OD值
8. 結果計算
一、操作因素對ELISA結果的影響ELISA操作步驟復雜,操作不當將引起較大的誤差。以下敘述各個步驟中的影響因素。
1.加樣
2.溫育
3.洗滌
4.顯色
5.比色
二、灰區(qū)的設置通常情況下,ELISA定性實驗以“陽性”和“陰性”來報告結果,兩者間有一條分界線被稱為“陽性判斷值”(cut-off value,CO值),這是定性**測定結果報告的依據(jù)。
三、標本復查ELISA手工檢測過程復雜,影響因素較多,即使室內質控在控,也可能因孔間差異而造成結果的差異,因此加大復查力度是保證結果準確性的可靠方法,比如對HBsAg、HBeAg、HCV-Ab、HIV-Ab、TP-Ab等項目的可疑、弱陽性標本及少見模式的檢測結果進行復查。
四、結果判斷和報告常用下列幾種方法表示結果:
1.定性測定
2.半定量測定 結果一般以滴度表示。
3.定量測定 即用已知量的標準品作一系列稀釋后進行ELISA測定,繪制標準曲線,結果以**量或單位表示。在ELISA定量檢測中每一塊反應板都必須繪制相應的標準曲線。
注意事項:
A 仔細閱讀說明書。
B 檢查試劑盒標簽上的有效期。如果超過有效期,請勿使用。
C 按說明書確定所有試劑齊全(數(shù)量、體積)。
D 標本制備要規(guī)范,每份標本體積要按2-3個復孔以上的量制備(貯存),盡量分裝做備份。短期內無法實驗者,注意低溫保存。
E 準備好所有實驗額外所需物品,(比如移液器,試管,清洗器,酶標儀)。
F 按說明書將所用試劑平衡至室溫,根據(jù)檢測標本數(shù)量確定所需試劑的量。
G 檢查試劑盒內每種試劑的貯存條件,保證所有試劑均按照試劑盒內說明書推薦的條件存儲。
H 檢查不穩(wěn)定或者變質的試劑溶液(比如沉淀或變色)。有些試劑,比如標準品稀釋液或者檢測稀釋液,可能在設計時就含有沉淀物。所有試劑在滴入酶標板之前,必需充分混勻。而由于沉淀物的特性,在加入酶標板之前,必需不停攪拌。
I 保證充分的孵育時間和溫度。
J 切勿使用不同生產批號的試劑取代現(xiàn)有試劑或混合現(xiàn)有試劑。
K 在混合或溶解蛋白溶液時,避免泡沫產生。
L 在實驗開始之前,安排好實驗流程。
M 在實驗開始之前,清潔工作臺。
N 若有問題,應與我公司或代理商的技術支持聯(lián)系
人轉鐵蛋白(TF)試劑盒結果判斷:
1. 每個標準品的OD值減去空白孔的OD值后作圖,如設置復孔,則應取其平均值計算。以標準品的濃度為橫坐標,OD值為縱坐標,繪出標準曲線。亦可以OD值為橫坐標,標準品的濃度為縱坐標,繪出標準曲線。
2. 推薦使用專業(yè)的曲線制作軟件,如curve expert 1.3或1.4,在軟件界面既可根據(jù)樣品OD值,由標準曲線查出相應的濃度,乘以稀釋倍數(shù);亦可將樣品的OD值代入標準曲線的擬合方程式,計算出樣品濃度,再乘以稀釋倍數(shù),即為樣品的實際濃度。
3. 若樣品OD值高于標準曲線上限,應適當稀釋后重測,計算濃度時應乘以稀釋倍數(shù)。
人轉鐵蛋白(TF)試劑盒有效期穩(wěn)定性考察
本試驗以轉鐵蛋白(TF)為例
1. OD值:
正常保存條件下有效期內和超過有效期2個月所測OD值比較
正常有效期內OD值: 3.251,2.845,2.126, 1.859, 1.463, 1.022, 0.710, 0.08
超過2個月有效期OD值:3.1.7, 2.643, 2.125, 1.796, 1.453, 0.876, 0.432, 0.07
2.回收率:分別于定值血清及血漿中加入一定量的轉鐵蛋白(TF)標準品,重復測定并計算其品均值,回收率為測定值與理論值的比率。
正常保存條件下有效期內和過有效期2個月elisa 試劑盒回收率檢測結果
Sample |
Conditions |
Recovery range(%) |
Average(%) |
Serum(n=6) |
normal |
88-106 |
95 |
After 12 month |
80-100 |
87 |
|
EDTA plasma(n=6) |
normal |
88-106 |
97 |
After 12 month |
78-98 |
87 |
3. 線性:分別于定值血清及血漿中加入一定量的轉鐵蛋白(TF)標準品,并將標本按1:2,1:4,1:8稀釋,線性范圍即為稀釋后樣本中轉鐵蛋白(TF)含量的測定值與理論值的比率。
正常保存條件下有效期內和過有效期2個月elisa 試劑盒回線性檢測結果
Sample |
Conditions |
1:2 |
1:4 |
1:8 |
Serum(n=6) |
normal |
81-92% |
85-90% |
89-105% |
After 12month |
80-88% |
82-87% |
87-101% |
|
EDTA plasma(n=6) |
normal |
93-104% |
81-97% |
91-96% |
After 12month |
82-95% |
75-82% |
74-90% |
4. 精密度:以樣品測定值的變異系數(shù)CV表示。CV(%)=SD/meanx100
批內差:取同一批次試劑盒對低值,中值和高值樣本進行定量檢測,每份樣本測定20次,分別計算不同濃度樣本的平均值和SD值。
批間差:選取 3 個不同批次的試劑盒分別對低、中、高值定值樣本進行定量測定, 每個樣本使用同一試劑盒重復測定 8 次,分別計算不同濃度樣本的平均值及 SD 值。(批內差: CV<10%;批間差: CV<11%)
正常保存條件下有效期內和過有效期2個月elisa 試劑盒回精密度檢測結果
Intra-assay precision
Conditions |
normal |
After 12month |
normal |
After 12month |
normal |
After 12month |
sample |
1 |
1 |
2 |
2 |
3 |
3 |
n |
20 |
20 |
20 |
20 |
20 |
20 |
Mean(ng/ml) |
16.68 |
14.22 |
70.25 |
62.36 |
369.75 |
327.88 |
SD |
1.08 |
1.25 |
4.21 |
5.31 |
24.69 |
32.87 |
CV(%) |
6.5 |
8.8 |
6.0 |
8.5 |
6.6 |
10 |
Conditions |
normal |
After 12month |
normal |
After 12month |
normal |
After 12month |
Sample |
1 |
1 |
2 |
2 |
3 |
3 |
n |
20 |
20 |
20 |
20 |
20 |
20 |
Mean(ng/ml) |
18.72 |
13.68 |
65.98 |
61.25 |
387.22 |
425.26 |
SD |
1.45 |
1.52 |
4.83 |
5.18 |
28.49 |
36.87 |
CV(%) |
7.7 |
11.1 |
7.3 |
8.5 |
7.3 |
8.7 |
人轉鐵蛋白(TF)試劑盒會出現(xiàn)的問題及解決辦法:
1. 加入反應終止液后,沒有吸光值或吸光值偏低。
a.原因:未加入酶標記物。
解決辦法:請按照操作步驟進行。
b.原因:試劑盒內容物未能充分回。
解決辦法:確定試劑盒內容物回溫后再進行操作。
c.原因:室溫太低。
解決辦法:若室溫太低(<19℃),請于操作步驟4,適當延長溫育時間。
d.原因:未使用試劑盒的清洗液清洗。
解決辦法: 請用試劑盒內所提供的清洗液清洗。
e.原因:試劑盒已過有效期限。
解決辦法:請更換成仍在有效期限內的試劑盒。
2. 標準曲線線性不佳,或是平行性不好。
a.原因:溫育位置避光不好或受到氣流干擾。
解決辦法: 請確認溫育位置既不透光也不透風(如抽屜內)。
b.原因:操作時間拖太久。
解決辦法:請在方法熟練后再進行操作。
c.原因:微孔間相互污染。
解決辦法: 加樣品時,請小心勿濺出微孔外,以免造成其它微孔的污染。
d.原因:標準品或酶標記物所加入的量不一致。
解決辦法:請使用已校正過的移液槍,并確保其與吸頭之間有高度密合性。
e.原因:添加樣品或試劑的操作方法不正確。
解決辦法:加樣品或試劑時,吸頭請勿接觸微孔。
f.原因:洗板過程發(fā)生問題(如管路堵塞、洗完板后未立刻進行下一步驟)。
解決辦法:請隨時監(jiān)控洗板機洗板過程,洗完后立即進行下一步驟。
3. 吸光值均偏高(或線性不夠陡)。
a.原因:室溫太高(>25℃)。
解決辦法: 若無法降低室內溫度,請適當縮短步驟4的溫育時間。
b.原因:底物溶液受到污染。
解決辦法: 若發(fā)現(xiàn)底物溶液已呈現(xiàn)淡藍色,請不要再使用。
c.原因:反應時間超過太久。
解決辦法:請控制反應時間。
d.原因:酶標記物污染了盒內其它試劑。
解決辦法:使用過的吸頭應立即丟棄,可避免試劑間相互污染,凡是試劑(特別是酶標記物與底物溶液)接觸過的容器應立即清洗干凈。(先以漂白水浸泡,再以清水沖洗干凈,可確保無殘留)
4. 陰性標準品的吸光值低于陽性標準品的吸光值。
a.原因:微孔中的試劑未能充分混合。
解決辦法: 試劑加完后,需輕敲盤四周使其充分混合均勻。
b.原因:洗板過程發(fā)生問題(同2-f.)。
解決辦法:請參考2-f.
c.原因:添加樣品或酶標記物的量不一致。
解決辦法: 請參考2-d.
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